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微生物检测-酵霉

王朝知道·作者佚名  2011-05-12
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分類: 教育/科學 >> 理工學科
 
問題描述:

请告知酵霉检测的方法步骤

以及培养液。

谢谢!

參考答案:

菌落总数测定操作细则

菌落总数是指检样经过处理,在一定条件下培养后(如培基成分、培养温度和时间、pH、需氧性质等),所得1mL(g)检样中所含菌落的总数。菌落总数主要作为判定检样被污染程度的标志,也可以应用这一方法观察细菌在检样中繁殖的动态,以便对被检样品进行卫生学评价时提供依据。

1 设备和材料

1.1 温箱:36±1℃。

1.2 冰箱:0~4℃。

1.3 恒温水浴:46±1℃。

1.1 天平。

1.5 电炉

1.6 吸管。

1.7 广口瓶或三角瓶:容量为500mL。

1.8 玻璃珠:直径约5mm。

1.9 平皿:直径为90mm。

1.10 试管。

1.11 放大镜。

1.12 菌落计数器。

1.13 酒精灯。

1.14 均质器或乳钵。

1.15 试管架。

1.16 灭菌刀或剪子。

1.17 灭菌镊子。

2 培养基和试剂

2.1 营养琼脂培养基:按GB 4789.28中4.7规定。

2.2 磷酸盐缓冲稀释液:按GB 4789.28中3.22规定。

2.3 生理盐水。

2.4 75%乙醇。

3 操作步骤

3.1 检样稀释及培养

3.1.1 以无菌操作,将检样25g(或mL)剪碎放于含有225mL灭菌生理盐水或其他稀释液的灭菌玻璃瓶内(瓶内预置适当数量的玻璃珠)或灭菌乳钵内,经充分振摇或研磨做成1∶10的均匀稀释液。

3.1.2 用1mL灭菌吸管吸取1∶10稀释液1mL,沿管壁徐徐注入含有9mL灭菌生理盐水或其他稀释液的试管内(注意吸管尖端不要触及管内稀释液),振摇试管,混合均匀,做成1∶100的稀释液。

3.1.3 另取1mL灭菌吸管,按上条操作顺序,做10倍递增稀释液,如此每递增稀释一次,即换用1支1mL火菌吸管。

3.1.4 根据检样卫生标准要求或对标本污染情况的估计,选择2~3个适宜稀释度,分别在做10倍递增稀释的同时,即以吸取该稀释度的吸管移1mL稀释液于灭菌平皿内,每个稀释度做两个平皿。

3.1.5 稀释液移入平皿后,应及时将凉至46℃营养琼脂培养基(可放置于46±1℃水浴保温)注入平皿约15mL,并转动平皿使混合均匀。同时将营养琼脂培养基倾入加有1mL稀释液的灭菌平皿内作空白对照

3.1.6 待琼脂凝固后,翻转平板,置36±1℃温箱内培养48±2h。

3.2 菌落计数方法

做平板菌落计数时,可用肉眼观查,必要时用放大镜检查,以防遗漏。在记下各平板的菌落数后,求出同稀释度的各平板平均菌落总数。

3.3 菌落计数的报告

3.3.1 平板菌落数的选择

选取菌落数在30~300之间的平板作为菌落总数测定标准。一个稀释度使用两个平板,应采用两个平板平均数,其中一个平板有较大片状菌落生长时,则不宜采用,而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数,若片状菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均匀,即可计算半个平板后乘2以代表全皿菌落数。平皿内如有链状菌落生长时(菌落之间无明显界线),若仅有一条链,可视为一个菌落;如果有不同来源的几条链,则应将每条链作为一个菌落计。

3.3.2 稀释度的选择

3.3.2.1 应选择平均菌落数在30~300之间的稀释度,乘以稀释倍数报告之。

3.3.2.2 若有两个稀释度,其生长的菌落数均在30~300之间,则视两者之比如何来决定。若其比值小于或等于2,应报告其平均数;若大于2则报告其中较小的数字。

3.3.2.3 若所有稀释度的平均菌落数均大于300,则应按稀释度最高的平均菌落数乘以稀释倍数报告之。

3.3.2.4 若所有稀释度的平均菌落数均小于30,则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数报告之。

3.3.2.5 若所有稀释度均无菌落生长,则以小于1乘以最低稀释倍数报告之。

3.3.2.6 若所有稀释度的平均菌落数均不在30~300之间,其中一部分大于300或小于30时,则以最接近30或300的平均菌落数乘以稀释倍数报告之。

3.3.3 菌落数的报告

菌落数在100以内时,按其实有数报告,大于100时,采用二位有效数字,在二位有效数字后面的数值,以四舍五入方法计算。为了缩短数字后面的零数,也可用10的指数来表示。

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